Филонотис (Philonotis hastata)

69. Philonotis, Br >

Description

This section is from the book “Catalogue Of Canadian Plants IV-VII”, by John Macoun. Also available from Amazon: Catalogue of Canadian plants.

69. Philonotis, Br >

Wet springy places, Oak Hills, Hastings Co., and in a ditch at Murray Town Hall, Northumberland Co., Ont.; not uncommon in mud and gravel along small rills and about springs around Victoria, Nanaimo and Nanaimo River, Vancouver Island; also by a little brook at Hastings, Burrard Inlet; and on the bank of the Columbia River at Revelstoke, B.C. (Macoun.)

Bartramia fontana, Drumm. Musc. Bor. – Am., No. 241.

Pictou Co., N.S. (McKay.) Vicinity of New Harbor, Bay Bull Arm and Blaketown, Newfoundland. (Rev. A. Waghorne.) Springy places; Molus River, Kent Co., also at Fredericton, N. B. (Fowler’s Cat.) Moist places, Tobique River, N.B. (Hay.) Very common at Canaan Forks and Tay, N.B. (J. Moser.) On wet rocks, Cap Rouge, Que. (St. Cyr.) Miquelon Island. (Delаmare.) In springs and by brooks and on wet rocks across the continent. At Truro and Straits of Canso, N.S.; bogs Tignish, Prince Edward Island; common on the Gaspй coast, Que.

at Ottawa and Lake Nipissing and on Gull Lake, Frontenac Co., Ont.; abundant at Lakes Superior and Nepigon and westward; at Hector, Rocky Mountains; Columbia Valley at Donald, and at the Asulcan Glacier, Selkirk Mountains; abundant at Revelstoke, on the Columbia River; in the Eagle Pass; at Quesnel on the Fraser; Hastings, and New Westminster, B.C.; abundant on Mount Benson and at Victoria, Vancouver Island. (Macoun.) Moist rocks, Crow’s Nest Pass, Rocky Mountains and on the mountains at Adam’s Lake, B.C.; alt. 5,000 feet. (Dawson.) On Mount Queest, Gold Range, B.C.; alt. 6,000 feet; Ounalaska, Behring Sea. 1891. (J. M. Macoun.) In springy wet places; common. (Drummond.) Rocky Mountains. (Bourgeau.) Chilwkweyuk, B.C. (Lyall.) Greenland. (Fl. Gr.)

Var. brachyphylla, Kindb. (n. var.)

In bogs, Brackley Point, Prince Edward Island. June 28th, 1888. (Macoun.)

Var. serrata, Kindb. (n. var.)

Swamps in Roger’s Pass, Selkirk Mountains. August 24th, 1885. (Macoun.) In boggy soil at Ounalaska and Atkah islands, Behring Sea, 1891. (J. M. Macoun.)

Var. microblasta, C. M. & Kindb. (n. var.)

Male flowers very small, brown; perigonial leaves all acute, strongly costate.

On damp earth along the railway track, Roger’s Pass, Selkirk Mountains, B.C,, 30th July, 1890. (Macoun.)

Var. Columbia, Kindb. (n. var.)

Lower leaves narrow; costa long-excurrent, perigonial leaves acute, or subacute.

On wet rocks below the Illicillewaet Canon, at Revelstoke, B.C., May 18th, 1890. (Macoun.)

(417.) P. glabriuscuia, Kindb. (n. sp.); Canadian Musci, No, 578.

Weberafontana, Kindb., Ott, Nat. Vol. IV. 62.

Tufts radiculose below, 4 cm. high. Stem slender. Leaves small, green, distant, spreading and straight when moist, indistinctly decur-rent, short ovate-lanceolate, short-acuminate, acute, slightly papillose, pellucid, plane at the margins, not plicate, minutely serrulate principally above; cells oblong-hexagonal, the lower narrower, less chloro-phyllose, costa subpercurrent. Habit of Webera albicans. Barren.

By springs in a gully, Canaan Forks, Queen’s Co., N.B. January 2nd, 1890. (J. Moser.)

415. P. marchica (Willd.) Brid.

In Part VI., on page 106, P. Macounii was placed as a synonym under this species. Later investigations have shown that the western specimens are really distinct from the eastern and are as they were first placed under P. Macounii.

In a railway ditch above Leamington, Ont., 1901. (Macoun.)

416. P. fontana, Brid.

On Smoky Mountain and at Margaree, Cape Breton Island, N.S., 1898; springs by Dow’s swamp, Ottawa, Ont., and in the beaver meadow, Hull, Que., 1900; in damp woods by Drum-mond’s Island, Niagara Falls, Ont., May, 1900. (Macoun.) St. Paul Island, Behring Sea. (Dr. Merriam.) Near the snow line, above the Basin, Juneau, Alaska. (Miss G. Cooley.) Rather common about Lake Lindeman and Lake Bennett, Yukon, 1899. (Williams)

Subsp. seriata, Mitten.

On earth, Gold Creek Canon, near Juneau, Alaska. (Miss G. Cooley)

1041. P, Macounii, Lesq. & James, Mosses of N. America, 208.

Wet places near Victoria, Vancouver Island, May 9th, 1875 type station); wet rocks, Nanaimo, V.I., June 6th, 1887; on wet earth, Hastings, B.C., April 13th, 1889; wet earth at Revelstoke, B.C., May 9th, 1890. (Macoun.) Juneau, alt. 3,000 feet; also a doubtful specimen from Gold Creek Canon, near Juneau, Alaska. (Miss G. Cooley.)

1042. p. Muhlenbergii, Brid.; Lesq, &. James., Mosses of N. America, 208.

On earth by a brook at Woodstock, N.B., July 4th, 1899. (Macoun.)

1043. p. Arnellii, Husnot.

On wet rocks, Greenland. (Wenck.)

1044. p. Vancouverensis, Kindb., Bryol. N. Am. & Eur. 326.

Leaves long-subulate; perigonial, patent, erect, broadly ovate-lanceolate, acute, nearly nerveless.

On wet earth at Yale, B.C., May 17th, 1889; on wet rocks along the Nanaimo River, April 26th, 1887. (Macoun.) Nagai Island, Alaska, Sept. 18th, 1892. (J. M. Macoun.)

1045. P. caespitosa, Wilson.

In swamps, Greenland. (Lange.)

1046. P. alpicola, Juratzka.

On wet ground, Greenland. (Vanhoeffen.) In Newfoundland. (Wag horne.)

1047. P. acutiflora, Kindb., Hedwigia, 1896, p. 77.

Leaves not serrate and not falcate, recurved to or above the middle, with double mamillae, generally appressed when dry, smaller than in P. calcarea. Perigonial leaves horizontally spreading. Tufts no high; fruiting stem very low.

On damp earth, Roger’s Pass, Selkirk Mountains, B.C., July 30th, 1890; in damp meadows, Pier’s farm, Victoria, Vancouver Island, May 8th, 1893. (Macoun.) On damp earth, Chilliwack River, B.C., 1901. (J.M. Macoun.)

1048. p. adpressa, Fergusson.

Wet places, Greenland. (Vanhoeffen.)

1049. P. radicalis, Beauvois.

Bartramia radicalis, Beauv.; Lesq. & James, Mosses of N. America, 206.

On rocks in a ravine at Goldstream, and on the shore of Shaw-nagin Lake, near Victoria, Vancouver Island, 1893. (Macoun.)

1050. P. pumila, Kindb., Bryol. N. Am. & Eur., 328.

Leaves erect, smaller and narrower than in P. rigida; costa scarcely excurrent. Tufts about 1 cm. high.

In ditches near the paper mill, Belleville, Hastings Co., Ont. (Macoun.)

Beliebte aQua-Themen

weiteres

© 2018 aQuaBits.de. All rights reserved.

Philonotis hastata · Quellmoos

Das als Quellmoos bekannte, zu den Laubmoosen zählende Philonotis hastata ist in den Tropen und Subtropen weit verbreitet, wo es emers – also über Wasser – an feuchten Stellen wächst und dort richtig dicke, teils auch hängende Polster entwickelt.

In Aquarien ist es eher selten anzutreffen, was unter anderem daran liegt, daß es nicht unter Wasser gedeiht und im Handel auch nicht weiter angeboten wird. Hat man jedoch ein wenig Glück, dann kann man über Pflanzen von Wasserpflanzengärtnereien an dieses Quellmoos kommen, so wie es auch bei uns der Fall war. Vor wenigen Jahren bestellten wir uns diverse Pflanzen und da hafteten kleine Büschel von Philonotis hastata zwischen den Blättern von Schwimmpflanzen sowie an der Steinwolle von (Teil-) Emers gezogenen Topfpflanzen.

Da wir zu diesem Zeitpunkt nicht wussten, um welches Moos es sich hierbei handelte, haben wir es einfach mal darauf ankommen lassen, denn genau sowas macht es doch oftmals so spannend – zu sehen, was sich aus was entwickelt und manchmal kann man sich dann eben über solch seltene Trittbrettfahrer freuen. Wir haben also die Schwimmpflanzen im Aquarium eingesetzt und zupften einiges von der Steinwolle, was wir ebenfalls auf der Wasseroberfläche treiben ließen.

Es dauerte nicht lange und wir konnten beobachten, wie sich immer mehr an einem Stück Moorkienholz, welches wenige Millimeter über die Wasseroberfläche ragt, festhaftete und auch, daß es bald unsere Juwel Strukturrückwand erklommen hatte. Das Wachstum würden wir als mittel bezeichnen – nicht zu schnell aber doch so, daß man die Entwicklung gut verfolgen kann.

Leider ist das Moos mit seinen sehr winzigen Blättern etwas zerbrechlich, weshalb es auch nicht sehr einfach ist, es in andere Aquarien heil zu überführen und nicht immer gelang es uns bisher, es in weiteren Aquarien zu kultivieren. Wir haben bisher noch nicht rausgefunden, warum es in dem einem Aquarium gut wächst und sich schon seit Jahren hält, wogegen es in einem anderen mit ähnlichen Parametern überhaupt nicht mag. Wasserwerte haben wir in den besagten Becken keine besonderen – weiches, leicht saures Wasser mit einer Temperatur von 20 bis 25°C, was ansich keine Extremwerte sind und da es eh nur über der Wasseroberfläche wächst, bekommt es in der Regel auch genügend Licht ab. Wir möchten uns dem Moos jetzt jedoch mehr zuwenden und werden an dieser Stelle ergänzen, sobald wir mehr rausgefunden haben.

Da wir an unseren Aquarien Abdeckungen haben, wodurch genügend Schwitzwasser entsteht, so daß der Überwasserbereich immer etwas feucht bleibt, passt das anscheinend sehr gut und ein zusätzliches befeuchten ist somit nicht nötig. Ansonsten bedarf es soweit auch keiner besonderen Pflege. Speziell gedüngt wird hier nicht, nur regelmäßig mit JBL Ferropol im Aquarium, von dem es sich wohl auch ein paar der benötigten Nährstoffe aus dem Wasser zieht und wenn die Polster mal zu groß geworden sind, nehmen wir einfach etwas raus oder setzen es vorsichtig um.

Interessant ist zudem noch, daß sich das Moos auch über Brutkörper, den sogenannten Gemmen, vermehrt. Anfangs dachten wir immer, wenn wir kleine grüne Fussel vom Philonotis hastata abfallen sahen, daß es zerfällt. Später fanden wir heraus, daß es sich dabei eben um diese Gemmen handelt, welche auf der Wasseroberfläche treiben und durch die Strömung verteilt werden, wo sie sich dann an anderen geeigneten Stellen wieder festheften, um neue Polster zu bilden.

Insgesamt handelt es sich hier ein rundum faszinierendes und sehr hübsches Moos. Wir sind sehr froh, daß wir es uns über andere Pflanzen „eingeschleppt“ haben und tun alles dafür, daß wir es weiterhin halten können und da Bilder bekanntlich mehr als Worte sagen, gibt es nachfolgend noch eine kleine Slideshow vom Philonotis hastata, welche wir immer wieder mal um neue Fotos erweitern. Als Größenvergleich eignet sich im übrigen der auf ein paar der Fotos zu sehende 4/6 mm Luft- bzw. CO2 Schlauch sowie die auf der Wasseroberfläche treibenden Wasserlinsen Lemna minor.

научная статья по теме АЗОТНЫЙ РЕЖИМ И БИОЛОГИЧЕСКАЯ АЗОТФИКСАЦИЯ В СООБЩЕСТВАХ МХОВ (ХИБИНЫ) Сельское и лесное хозяйство

Цена:

Авторы работы:

Научный журнал:

Год выхода:

Текст научной статьи на тему «АЗОТНЫЙ РЕЖИМ И БИОЛОГИЧЕСКАЯ АЗОТФИКСАЦИЯ В СООБЩЕСТВАХ МХОВ (ХИБИНЫ)»

ПОЧВОВЕДЕНИЕ, 2007, № 4, с. 505-509

АГРОХИМИЯ И ПЛОДОРОДИЕ ПОЧВ

УДК 579.2662:58232 (470.21)

АЗОТНЫЙ РЕЖИМ И БИОЛОГИЧЕСКАЯ АЗОТФИКСАЦИЯ В СООБЩЕСТВАХ МХОВ (ХИБИНЫ)

© 2007 г. В. И. Егоров

Полярно-альпийский ботанический сад-институт Кольского НЦ РАН, 184250, Кировск, Мурманской обл. Поступила в редакцию 10.05.2006 г.

Изучены динамика содержания минеральных и легкогидролизуемых (по Корнфилду) форм азота в подстилке и азотфиксирующая способность эпифитных цианобактерий на доминирующих видах мхов в растительных поясах Хибин. Выявлено, что азотный режим большинства видов мхов бездефицитный, что, возможно, связано со значительной активностью усвоения молекулярного азота эпифитными цианобактериями (за вегетационный период в отдельных случаях до 28% от общего содержания азота в растениях) и невысокой продукцией органического вещества мхами.

Напочвенный покров большинства растительных группировок тундровых, таежных зон и болот сформирован в значительной степени мхами. Некоторые из них являются пионерами зарастания обнаженных каменистых и мелкоземистых субстратов и играют незаменимую роль на начальных этапах процесса почвообразования. В суровых условиях Хибин мхи способствуют улучшению экологических условий обитания живых существ за счет высокой водоудерживающей способности и поддержания более высокой температуры в субстрате.

Среди элементов минерального питания растений в условиях Севера обычно азот находится в первом минимуме и определяет интенсивность процесса накопления органического вещества. С атмосферными осадками в биогеоценозы Хибин поступает около 5 кг/га азота в год [5]. За счет жизнедеятельности почвенных свободноживу-щих азотфиксирующих микроорганизмов фиксируется 1-3 кг/га атмосферного азота в год [4]. Для успешного функционирования даже очень бедных тундровых фитоценозов этого количества азота явно недостаточно. Можно предположить, что жизнедеятельность мхов на бедных азотом субстратах связана с поступлением его из дополнительных источников, например, от ассоциативных азотфиксирующих цианобактерий. Изучение особенностей круговорота азота и роли азотфиксирующих микроорганизмов в сообществах мхов представляет несомненный интерес. Подобных исследований в растительных зонах Хибин не проводилось.

Целью нашей работы было изучить азотный режим в субстрате под разными видами мхов и выявить роль эпифитных автотрофных (цианобактерий) и гетеротрофных (анаэробных и фа-

культативно-анаэробных) азотфиксирующих микроорганизмов в процессе азотфиксации мхов.

ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ

Изучали динамику содержания легкогидро-лизуемого (по Корнфилду), аммиачного, нитратного и общего азота в подстилках под одно-и многовидовыми подушками мхов в тундровом, лесо-тундровом и лесном растительных поясах г. Вудъяврчорр методами, описанными в руководстве [1]. Количество эпифитных азотфиксирующих циано- и гетеротрофных бактерий учитывали методом предельных разведений, путем их микробиологического посева после десорбции с поверхности растений на питательную среду Голлербаха [7], но без азотнокислого калия для первых и посевом на картофельную среду для вторых, в трехкратной повторности. Пробирки с посевами цианобактерий выдерживали в течение одного месяца на свету, затем визуально под ультрафиолетовым освещением отмечали наличие роста. Содержимое этих пробирок переливали в стерильные флаконы объемом 14.5 см3 для выявления нитрогеназной активности (по способности восстанавливать ацетилен), вносили шприцем 1 см3 ацетилена, закрывали резиновыми пробками с зажимами и инкубировали в течение суток на свету. Количество восстановленного ацетилена определяли на газовом хроматографе. Аналогичные процедуры проводили с пробирками с картофельной средой, только их инкубировали в темноте в течение двух недель, и наличие роста в них устанавливали по газообразованию и помутнению среды. Численность азотфиксирующих микроорганизмов подсчитывали по таблицам Мак-Креди [2].

Читайте также:  Ротала мексиканская (Rotala mexicana)

Таблица 1. Содержание общего и легкогидролизуемого по Корнфилду азота в подстилке под растениями, 2004 г.

Мхи и их местообитание N общ, % N легкогидролизуемый, мг/кг

16.06 05.07 27.07 17.08

Антелия Юрацки (Anthelia juratzkana (Limpr.) Trev.), тундра, на мелкоземе 1.28 ± 0.07 770 ± 59 777 829 ± 24 879 ± 32

Саниония крючковатая (Sanionia uncinata (Hedw.) Loeske), тундра, на почве 1.17 ± 0.08 Не опр. 403 ± 1 725 ± 35 619 ± 4

Маршанция альпийская (Marchantía alpestris (Nees) Burgeff.), лесотундра, на почве 1.24 ± 0.04 692 ± 11 546 ± 20 714 ± 28 781 ± 59

Филонотис ключевой (Philonotis fontana (Hedw.) Brid.), то же 1.28 ± 0.04 655 ± 1 716 ± 32 784 ± 8 636 ± 20

Блазия крошечная (Blasiapusilla L.), лес, на почве 1.44 ± 0.10 747 ± 43 820 ± 20 812 ± 24 901 ± 8

Бриум Вейгеля (Bryum Weigelii Spreng.), то же 1.71 ± 0.01 840 ± 8 845 ± 47 820 ± 28 691 ± 52

Гигрогипнум твердоватый (Hygrogipnum duriuscu-lum (Vent.) Jamieson.), лес, на камне 0.99 ± 0.09 551 ± 12 551 ± 36 515 ± 16 456 ± 12

Скапания топяная (Scapania uliginosa (Lindenb.) Dum.), то же, на почве 0.66 ± 0.01 308 ± 8 Не опр. 313 ± 70 448 ± 15

Горно-тундровая почва, гор. А0 1.66 ± 0.06 383 ± 20 477 ± 30 486 ± 15 556 ± 25

Горно-лесная почва, гор. А0 1.38 ± 0.04 462 ± 11 584 ± 12 623 ± 24 570 ± 30

Азотфиксирующую активность цианобакте-рий на мхах определяли модифицированным ацетиленовым методом [3]. Образцы растений с площадки 1 см2 помещали в пенициллиновые флаконы и инкубировали с ацетиленом в месте отбора в природных условиях освещенности и температуры в течение суток. Процесс азотфиксации останавливали добавлением 2 мл реактива Нессле-ра. Количество восстановленного этилена определяли с использованием пламенно-ионизационного детектора газового хроматографа ЛХМ-80.

РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

В табл. 1 представлены данные по содержанию общего и легкогидролизуемого азота в подстилках под растениями. Под большинством видов растений коэффициент корреляции между содержанием общего и легкогидролизуемого азота в течение вегетационного периода колебался от 0.67 в четвертый срок отбора до 0.95 в первый (во второй срок он составил 0.84, в третий – 0.90). В среднем в течение вегетационного периода между изучаемыми показателями наблюдалась тесная связь (коэффициент корреляции 0.91). Для сравнения в таблице приведены данные по содержанию азота в подстилках полностью сформировавшихся почв (горно-тундровой и горно-лесной подзолистых Al-Fe-гумусовыx почв). Содержание общего азота в подстилке горно-тундровой почвы выше по сравнению с горно-лесной, тогда как по количеству легкогидролизуемых форм выделяется подстилка горно-лесной почвы. В органическом веществе подстилки горно-тундровой

почвы в процессе ее формирования накапливается повышенное количество трудноразлагаемых смол и битумов [5], что сказывается на содержании легкогидролизуемых форм среди азотистых веществ этой почвы. По-видимому, по этой же причине и содержание легкогидролизуемого азота в большинстве случаев значительно выше в подстилках развивающихся почв (под мхами) по сравнению с уже сформировавшимися (горнотундровой и горно-лесной).

Большинство из исследованных видов мхов являются накопителями доступных форм азота в своей подстилке. Это подтверждают и данные по содержанию минеральных форм азота в этих подстилках (табл. 2). Минеральный азот в течение первых трех сроков отбора образцов встречался в значительных количествах, преимущественно в аммиачной форме, и только к концу вегетационного периода наблюдалось его резкое снижение и увеличение нитратного азота. Преобладание аммиачных форм азота, возможно, связано с недостаточной активностью нитрифицирующих микроорганизмов в подстилках горных почв Хибин [6].

Накопление азота в сообществах мхов происходит не только за счет поступления его с атмосферными осадками, но и в значительной степени путем фиксации молекулярного азота эпифитными азот-фиксирующими микроорганизмами (табл. 3). В течение вегетационного периода азотфиксирую-щая активность микроорганизмов в сообществах мхов варьирует. Максимальная активность накопления азота за наблюдаемый период отмечалась для листостебельного мха бриума Вейгеля (Bryum veigelii) и составляла 94 мкг/см2 или 9.4 кг

АЗОТНЫЙ РЕЖИМ И БИОЛОГИЧЕСКАЯ АЗОТФИКСАЦИЯ

Таблица 2. Динамика содержания аммиачного (над чертой) и нитратного (под чертой) азота в подстилке под растениями, 2004 г., мг/100 г

Мхи 16.06 G5.G7 27.07 17.G8

N-NH+/N-NO- N-NH+/N-NO- N-NH+/N-NO- N-NH+/N-NO-

Антелия Юрацки (Anthelia juratzkana) 2.1/G.24 2.6/G.G6 2.31/G.G6 G.37/G.24

Саниония крючковатая (Sanionia uncinata) Не опр. 2.4/G.16 2.19/G.G6 G.44/G.18

Маршанция альпийская (Marchantía alpestris) 2.5/G 2.3/G 1.87/G G.5G/G.27

Филонотис ключевой (Philonotis fontana) 2.4/G.G6 1.9/G 1.85/G.G6 G.44/G.13

Блазия крошечная (Blasia pusilla) 2.4/G.G6 1.9/G.G6 2.35/G.12 G.5G/G.21

Бриум Вейгеля (Bryum Weigelii) 2.3/G.G6 2.5/G.13 2.75/G.12 G.56/G.24

Гигрогипнум твердоватый (Hygrogipnum duriusculum) 2.5/G.G6 2.6/G.G6 3.25/G G.54/G.15

Скапания топяная (Scapania uliginosa) G.2/G 3.6/G 2.5G/G.G6 G.44/G.18

Таблица 3. Динамика азотфиксирующей активности цианобактерий на мхах, мкг N/сутки/см2 поверхности субстрата, 2004 г.

Мхи 16.06 G5.G7 27.G7 17.G8

Антелия Юрацки (Anthelia juratzkana) G.32 ± G.13 G.91 ± G.38 G.71 ± G.38 G.33 ± G.3G

Гимноколеа вздутая (Gymnocolea inflata (Huds) Dum), Лофо-зия (Lophozia sp) 1.G4 ± G.23 G.23 ± G.G6 G.29 ± G.G8 G.95 ± G.44

Лимприхтия отвернутая (Limprichtia revolvens (Sw.) Loeske); Тритомария пятизубая (Tritomaria quinquedentata (Huds.) G.47 ± G.3G 1.21 ± G.25 G.95 ± G.39 G.95 ± G.41

Саниония крючковатая (Sanionia uncinata) G G.G5 ± G.G6 G.G1 ± G.G1 G.44 ± G.26

Маршанция альпийская (Marchantia alpestris) G.G5 ± G.G1 G.1G ± G.G3 G.G7 ± G.G2 G.13 ± G.12

Филонотис ключевой (Philonotis fontana) G.G4 ± G.G3 G.G1 ± G G.G1 ± G.G1 G.G1 ± G.G1

Блазия крошечная (Blasia pusilla) G.G1 ± G.G1 G.G1 ± G.G1 G.G6 ± G.1G G

Бриум Вейгеля (Bryum Weigelii) G.82

Для дальнейшего прочтения статьи необходимо приобрести полный текст. Статьи высылаются в формате PDF на указанную при оплате почту. Время доставки составляет менее 10 минут. Стоимость одной статьи — 150 рублей.

Пoхожие научные работы по теме «Сельское и лесное хозяйство»

ЕФИМОВ Д.Ю., ТРЕФИЛОВА О.В. — 2015 г.

ПРОВОРОВ Н.А., ТИХОНОВИЧ И.А. — 2007 г.

ИЛЬЮШЕНКО И.В., КОЗЕИЧЕВА Е.С., ШАФРАН С.А. — 2015 г.

МАМАЙ А.В., СТЕПАНОВ А.Л., ФЕДОРЕЦ Н.Г. — 2013 г.

BBS Interim Census Catalogue 2013 (стр. 7 )

Из за большого объема этот материал размещен на нескольких страницах:
1 2 3 4 5 6 7 8

M105.4 Bartramia stricta (14), 43, 47, 88. C.

M106.1 Conostomum tetragonum (49, 69, 86), 87‑90, 92, 94, 96‑100, 103‑108, (112).

M107.1 Philonotis rigida 1‑4, 43, 45, 48, 49, (50), 71, 75, (87). H1, (2, 3), 16, (20), 27, 33, 35, 39. C.

M107.2 Philonotis marchica 10, (65).

M107.3 Philonotis arnellii 1, 2, (3), 4, (9, 10), 13, (14‑17, 22, 23), 35, (36, 37), 40, 42‑50, 57, 58, 60, 64, 67‑69, (70), 72, (73), 75, (81), 82, 83, (86), 87, 90, 92, 93, 95‑98, 101, 103‑105, 108, (109), 111. H16, 30, (36, 38, 39). C.

M107.4 Philonotis caespitosa 1, 2, 4, 6, 8, 9, (10), 11, (13, 14), 17, (22), 38, 40, 41, 43‑49, 57, (58), 59, 60, 63‑69, (70), 73, 75, 79, 81, 83‑86, (90), 93, 95‑98, (99), 102‑104, 107, 108, 112. H(1), 4, 8, 12, 16, 20, 27, 29, 30, (31, 33), 37, 38, (39), 40. C.

M107.5 Philonotis fontana 1‑13, (14), 15‑18, (19), 20, (21), 22, 23, (24, 25), 26‑28, (29), 30, (32), 33‑54, (55), 57‑112. H1‑18, (19), 20, 21, 23‑40. (C).

M107.6 Philonotis tomentella 49, (65, 68‑70), 88‑90, 94, 96‑98, 103‑105, 107, 110, 112. H27, 34, 35.

M107.7 Philonotis seriata 49, 87‑90, 92, 94‑98, 103, 105‑108, (111).

M107.8 Philonotis calcarea 2, (3, 4), 5, (7), 8, 9, 11, (12), 22, 23, (26), 27, 28, (32‑34), 35, 36, (37), 38‑52, (53), 54, 57‑70, 72, 73, (74), 75‑83, 85‑96, 98‑112. H(1), 2, 6, 7, 9‑11, 14‑31, (32), 33‑36, (37‑39), 40.

M107.9 Philonotis cernua (48, 90), 97, (98, 105, 110). H1, (16), 27.

M108.1 Breutelia chrysocoma 1‑6, (9), 11, 35, 36, (39), 40‑52, (54, 55), 57, (59), 60, (61), 62, (63), 64‑80, (81), 83, (85), 86‑112. H1‑18, 20, (24), 25‑40.

M109.1 Plagiobryum zieri 35, 36, (39‑41), 42‑44, 47‑50, 57, (59), 60, (62), 63‑70, 72, (73), 75‑80, 82, 83, 85‑90, 92, 94, 96‑99, (100), 101‑108, (109), 110, 111. H(1), 7, 8, 16, 27‑29, 34, 35, 39, 40.

M109.2 Plagiobryum demissum 88, (89), 90, 98.

M110.1 Anomobryum julaceum 1, (3), 35, 36, (39), 40‑45, 47‑50, 52, 57, (59), 60, 64‑70, (71), 72‑75, (76), 77‑83, 86‑92, (93), 94‑112. H1‑3, 6, 7, 9, (15), 16, 20, 26‑29, (30, 31), 33‑36, (37), 38‑40.

M110.2 Anomobryum concinnatum 36, 40‑45, 47‑49, 57, 59, 60, 64, 65, (66), 68, 69, (70), 78‑80, 82, 83, 88‑90, 92, 94‑99, 101‑105, 107, 108, 110. H1, 3, 6, 8, 9, 16, 26‑29, 33‑35, 39, 40.

M111.1 Bryum marratii 41, 44, 46, 48, 49, 54, (59, 60, 62), 68, 70, (75), 82, (85), 90, 101‑103, 108, 109. H1, 21, 27, 34, 35, (40).

M111.2 Bryum warneum 4, (6), 15, (28), 41, (44), 46, 48, (49), 52, 54, (58), 59, (60, 62, 66), 69, (75), 82, 85, 90, (95), 105. H21, 27, 34, 35.

M111.3 Bryum calophyllum (4), 46, 48, (49), 52, (58), 59, (62, 66, 68), 69, 82, (85), 90, (95), 105, 108, (109), 111. H16, 27.

M111.4 Bryum arcticum 88‑90, 92, 104.

M111.5 Bryum uliginosum (22, 23, 37, 39, 48, 58‑64, 68, 70, 72, 77, 82, 85, 86, 88, 90, 92, 108, 109). H(7, 18), 21, 25, 26, (33), 34, (39).

M111.6 Bryum pallens 1‑20, (21), 22‑25, (26), 27‑30, (32), 33‑73, 75‑112. H1‑37, (38), 39, 40.

M111.7 Bryum turbinatum (13, 23, 35, 39, 42, 48, 59, 67, 104). H(27).

M111.8 Bryum schleicheri 86, (88).

M111.9 Bryum weigelii 40, 49, (64), 65, 68‑70, 72, 77‑80, 87‑94, (95), 96‑98, 103‑108, (109, 111). H(6).

M111.10 Bryum cyclophyllum (69, 70), 83, 86, 98, 99, 101, (105).

M111.11 Bryum algovicum 1‑4, (5), 6‑9, (10), 11‑16, (17), 18, 19, (20), 22, 23, 25‑29, (30), 31‑33, (34), 36, 37, (39), 40, 41, (42), 43‑50, (51), 52‑60, (61), 62‑64, (65), 66‑71, (72), 73‑75, (77, 78), 80, 82‑86, (87), 88‑95, (96), 97, 100‑112. H1‑4, (5), 6, (7), 8, 9, 11‑13, (14), 16‑20, (21, 22), 23, 25‑30, (33), 34, 35, 37, 38, (39), 40. C.

M111.12 Bryum salinum (5), 70, (75), 91, 102, 105, 106, 108. H1, (17).

M111.13 Bryum knowltonii (4, 9), 19, 20, (22), 24, (25, 26), 28, 47‑49, (52), 54, (58), 59, (60, 62, 65, 66), 68, 69, (82), 90, 105, 106. H26.

M111.14 Bryum archangelicum 1‑6, (8), 9‑13, (14), 15, (16‑19, 21), 22, (23), 24‑26, 28, 29, (30, 32‑34), 35‑37, (38), 39‑41, (42), 43‑57, (58), 59, 60, (61), 62‑69, 71, (72, 73), 74, 75, (78), 81‑83, (85), 87‑98, (99), 100, 101, 103‑112. H1‑3, (4, 5), 6, 9, 10, (11), 12, 15‑18, (20, 21), 22, (23), 24‑33, 35, 36, (37), 38‑40. C.

M111.15 Bryum intermedium (1, 2), 3, (4), 6, (8), 9, (10), 11, 12, (14), 15, (16, 17), 18, (19), 21, 22, (23, 25, 26), 28, 29, 31, (32), 33, 34, 36, (37‑39), 40, 41, (44, 45), 46, (48, 49), 51, (52), 53‑56, (57), 58‑60, (61‑63), 64, 65, 67‑70, (73, 74, 81), 82, (83, 85, 86), 90, (91, 92), 97, (104), 109. H(4), 21, 26, (34), 38, 39, (40).

M111.16 Bryum donianum 1‑13, (14), 15, (16), 17‑19, 25‑29, (34), 35‑37, 40‑42, 44‑50, 52, 53, (59), 60, 71, 74. H1, 3‑7, 9, 11, 12, 19‑23, 27, 28, 40. C.

M111.17 Bryum capillare 1‑112, H1‑40. C.

M111.18 Bryum elegans (14, 36), 40, 47, 50, 57, 59, 60, 64‑66, (68), 69, 70, (81), 82, (87), 88‑90, 92, 94, 95, 97, (98), 108. H28, 29.

M111.19 Bryum moravicum 3‑9, 11‑44, 47, 48, 50, 51, 53‑70, 72, 74, 78‑85, 88, 89, 92‑96. H1.

M111.20 Bryum torquescens 1‑3, 5, 6, 8‑12, (13, 14, 16), 19, (23), 26, (28), 29, 32, (33, 34, 36), 41, 42, 45, 48‑50, 52, (54), 60, 63, (64, 66, 71, 75, 86, 87), 106. H(2, 5, 7), 9‑11, (16, 21, 25), 33, 34, 39, 40.

M111.21 Bryum canariense 3, 6, 9, 10, (13, 14), 15, (16, 34, 36), 39‑41, 44, 45, 47, 49, 50, 52, 57, 60. (C).

M111.22 Bryum creberrimum 6, 9, (11, 13, 14, 16), 17, 23, (29, 34), 40, (42), 43, 49, 50, (57, 58), 59, (60, 61, 66, 69, 70, 77, 88), 89, 95, (96), 106. H4, 15, 21.

M111.23 Bryum pallescens 1‑3, 6, 8, 9, 11, 13, (14), 15, (16), 18, 19, 22, (23), 25‑27, 29, 31, (34), 35‑52, 55, 57‑60, (61, 62), 63‑65, (66, 67), 68, (69), 70, (71), 72‑74, 80‑83, (85), 87, 88, 90, 92‑97, (98), 102, 104, 105, 107, 108, 110‑112. H1‑4, 7, 9‑13, 15‑18, 20, 22, 25‑30, 32‑36, (38), 39, 40. C.

M111.24 Bryum pseudotriquetrum 1‑6, (7), 8‑37, (38), 39‑112. H1‑13, (14), 15‑40. C.

M111.24.a Bryum pseudotriquetrum var. pseudotriquetrum 1‑3, 18, 28, 49, 57, 59, 64, 65, 68, 70, 72, 73, 82, 88‑92, 102, 106, 107, 109, 110, 112. H1‑3, 7, 9, 12, 15‑19, 21, 25‑31, 33‑35, (37), 38‑40.

Читайте также:  Криптокорина Устериана (Cryptocoryne usteriana)

M111.24.b Bryum pseudotriquetrum var. bimum (1), 2, (3), 5, (6), 9, (10, 11), 12, (16), 17, (18), 19‑23, 26, (27), 28‑33, (34), 35, (36), 37, (38), 41, 44‑46, 50, 51, (52), 53, 54, (55), 58‑61, 63, (64), 66, (68), 69, 70, 75, 77, (81, 83, 86, 88), 90, 92, 96, 98, 99, 101, 106, 107. H1, 2, 4, 9‑12, 15‑18, (20, 23), 25‑28, (32), 33, 35, (38), 39, 40. C.

M111.25 Bryum caespiticium 1‑6, (7), 8‑70, 72‑78, (79), 80‑85, (86‑88), 89‑92, 94, (95, 97), 98, (99), 101‑104, 106‑109, 111. H(7), 11, 18, 26, 31, (39). C.

M111.26 Bryum kunzei 1, 3, 6, 9, (14), 35, (36), 40, 41, (43), 47, 49, 52, (57, 63, 66).

M111.27 Bryum argenteum 1‑112, H1‑40. C.

M111.28 Bryum dixonii 87‑90, 92, 96‑98, 104, 106‑108, 110.

M111.29 Bryum gemmiferum 1‑4, 6, (7), 8‑10, 12‑38, 40, 41, 44‑51, 53‑66, 68, 70, 71, 81, 82, 84‑86, 88, 95, 97, 101, 106, 108‑111. H4, 5, 7, 8, 11, 12, 14, 18, 19, 21, 22, 24‑27, 29, 30, 36, 38, 39. C.

M111.30 Bryum gemmilucens 6, 9, (13), 20, 22, 25, 27‑29, 34, 38, 53, 54, 56, (62), 63.

M111.31 Bryum dichotomum 1‑112, H1‑40. C.

M111.31A Bryum apiculatum 1, 2.

M111.32 Bryum dyffrynense 1, 15, 48, 52, 59, 69. H16, 27, 35, 40.

M111.33 Bryum radiculosum 1‑43, 45‑65, 67, 68, (69), 70‑75, 77, 78, 80‑90, 92‑94, 96‑98, (101), 102‑104, (105), 106‑108, (110), 111. H1‑5, 7, (8), 9‑13, (14), 15, 16, 18‑23, 25, 27, 29‑33, 35‑40. C.

M111.34 Bryum ruderale 1‑45, 47‑70, 72, 75, 76, 78, 79, 81‑87, 89, 90, 92‑97, 99‑103, 105, 107‑110, 112. H1‑27, 29‑35, 37‑40. C.

M111.35 Bryum violaceum 1‑51, 53‑66, 68, 70‑74, 76, 77, 80‑85, 88, 89, 91‑96, 98, (99), 101‑103, 106‑109, 111. H1, 3‑5, 7‑9, 11, 13‑15, 18, 19, 21‑23, 26, 29, 31, 34, 35, (38), 39. C.

M111.36 Bryum klinggraeffii 1‑20, 22‑70, 73, 74, 76, 77, 80‑83, (84), 85, 87, 88, 90‑96, 98, (99), 101‑103, 106, 108‑112. H1, 3‑32, 34, 35, 39, 40. C.

M111.37 Bryum sauteri 1‑5, 9, 11, 12, 14‑16, 20, 22, 27, 28, 34‑37, 41‑52, 57, 60, 62, 63, 66, 69‑71, 73‑77, 81, (83), 85‑87, 89‑94, 96, 98, (99), 100‑104, 106, 107, 109, 112. H1, 3, 4, 6‑9, 13, 16, 20, 27, 30, 31, 34, 35, 39. C.

M111.38 Bryum valparaisense 1.

M111.39 Bryum tenuisetum 1, 2, (9), 11, 12, (17), 20, 21, (25), 29, 42, 43, 47‑50, 52, 57, 59, (61), 63, 64, 78, 82, 83, (86, 90), 97‑99, 101, 104, 108, 112. H29, 35. C.

M111.40 Bryum subapiculatum 1‑17, 20‑50, 52‑69, 71‑75, (76), 77‑94, 96‑98, (99), 101‑105, 108‑112. H1, 3‑6, 10, 12, 13, 15, 16, 20, 22, 23, 27, 29‑31, 34, 36‑40. C.

M111.41 Bryum bornholmense 1‑3, 5, 7‑9, 11‑17, 19, 20, 22‑28, 30, 36, 37, 39, (40), 41, 43‑45, 47, 48, 50, (55), 57, 61, 62, 64, 67, 69, 72, 73, 79, 83, 86, (88), 90, 95, 98, 102, 103, (105), 106, 110, 112. H(1), 2, 8, 21, 22, 35, 40.

M111.42 Bryum rubens 1‑112, H1‑29, 31, 33‑40. C.

M111.43 Bryum riparium 41, 43, 44, 46‑49, 64, 65, (69), 70, 73, 75, 80, 86‑90, 92, 95‑99, 101‑106, 108‑110. H(1), 6, 16, 27, (38).

M111.44 Bryum mildeanum (36), 42, 44, (49), 64, (65, 66, 69), 70, (87, 88), 89, 91, 92, 97, 98, 107, 108.

M111.45 Bryum muehlenbeckii 49, 88, 92, 96, 97, (103), 105‑107, (108).

M111.46 Bryum gemmiparum (3), 4, 35, 42. H26.

M111.47 Bryum alpinum 1‑5, 9, (10), 11, 12, (14, 18, 34), 35, 36, 40‑50, (51), 52, (55), 57, 58, (59), 60, 63‑80, (81), 82, 83, (84), 85‑90, 92, 93, 95‑112. H1‑9, (13, 14), 16, 20, (21, 24, 25), 26‑28, 30, 31, 33‑40. C.

M112.1 Rhodobryum roseum 2‑14, (15), 16, 17, 19, 20, (21), 22‑24, (25), 26, (27), 28, (29), 30, 32, 33, (34), 35‑37, (38), 39‑52, 54, 55, 57, (58, 59), 60, 62, (63, 64), 65‑70, (71), 72, (73, 74), 75, (76, 77), 78‑85, (86), 87‑90, (91), 92, 95‑98, (99), 100‑106, 108, 110, 112. H2, (4, 5), 6, 8, (9), 11, 15, 16, (18, 20), 22, 26, 27, 29, 31, 33, 35, (36, 38), 39, 40.

M113.1 Mielichhoferia elongata 62, 92, 108.

M113.2 Mielichhoferia mielichhoferiana 92, 98.

M114.1.a Pohlia elongata var. elongata 2, 4, (11), 35, 40‑50, 57, 59, 60, 63‑70, 72, 73, 75, 86‑90, 92, 94, 96‑98, (99), 100, 101, 103‑108, 110. H1, 3, 6‑8, 16, (20), 27, 29, 34, 35, (38), 40.

M114.1.b Pohlia elongata var. greenii 49, 69, 70, 73, (86), 87‑90, 92, 96‑100, 103‑106, (107), 108. H(1), 7, 16.

M114.2 Pohlia crudoides 96.

M114.3 Pohlia cruda 3, (4), 35, 36, 40, 42‑44, 46‑50, 57, 59, 60, (62), 63‑70, 72, (73), 75‑99, (100), 101, 103‑110, 112. H1, 6‑8, 10, 16, (20, 21), 27‑29, 33‑35, (38), 39, 40.

M114.4 Pohlia nutans 1‑112, H1‑13, (14), 15‑18, (19), 20‑25, 27‑30, 32‑40. C.

M114.5 Pohlia obtusifolia (88), 94, 96, 97, 105.

M114.6 Pohlia drummondii 1, 2, (7, 11), 12‑14, (22), 27, 40‑49, 57‑60, (62), 63‑69, 72, 73, 75, 78‑80, (81), 82‑85, (86), 87‑90, 92, 94‑99, 103‑108, 110, 112. H1, 3, 5, 12, 16, 27‑29, 31, 34‑36.

M114.7 Pohlia scotica 88, 96‑99, 106, 108.

M114.8 Pohlia filum 2, (17), 43, 44, (60), 67, 73, (74), 83, (85, 86), 87‑90, 92‑99, 101, 105‑108, 112. H6, 27, 35, 36, 40.

M114.9 Pohlia andalusica 1‑3, 105. H3, 6.

M114.10 Pohlia bulbifera 2, 3, 5, 27, 36, 38, 40, 42‑50, 57‑60, 63, 64, 67, 69, 70, 73‑79, 81‑84, 86‑90, 92‑108, 110, 111. H1, 3, 4, 6, 11, 16, 26‑31, 33‑35, (36), 38, 39.

M114.11 Pohlia annotina 1‑25, (26), 27‑30, 32, 34‑52, 54‑110, 112. H1‑10, 12‑14, 16, (19), 20, (21), 25‑31, 33‑40. C.

M114.12 Pohlia proligera (37), 50, (69), 77, 80, 81, 86, 88‑90, 92‑97, 106. H40.

M114.13 Pohlia camptotrachela 1‑6, 10, (11), 17, 23, 39‑50, 52, 57‑60, 62‑65, 68‑78, 80‑109, 112. H1‑4, 6, 9, 10, 12, 16, 20, 26, 27, 30, 32‑36, 38‑40.

M114.14 Pohlia flexuosa 1‑3, 41, 42, 44, 46‑49, 57, 59, 60, 63‑65, 69, 70, 72‑75, 77, 78, 80, 83, (86), 87, 88, 95‑106, 108, 110. H1‑3, 6, 7, 9, 16, 27‑29, 34, 36, 39, 40.

M114.15 Pohlia ludwigii (48), 49, (65), 68, 69, (70, 86), 87‑90, 92, 94, 96‑98, (99), 104‑107, (108).

M114.16 Pohlia lutescens 1‑20, 22‑27, 29, 30, 32‑52, 55‑60, 62‑64, 66‑68, (69), 70‑74, 78, 79, 81‑83, 86, 89, 92, 93, 95, 96, 98‑101, 104, 107, 109. H2, 3, 6, 8‑10, 12, 20, 27, 33, 36, 37. C.

M114.17 Pohlia lescuriana 1‑3, 6, 8, 10‑17, 20, 21, 24, 29, 33‑35, 39‑41, 43, 44, 47‑50, 57‑60, 63, 64, 71, 76‑78, 85, 86, 88, 90‑92, 96, 98, 99, 107‑109. H3, 4, 8.

M114.18 Pohlia melanodon 1‑85, 88‑95, 97‑112. H1‑40. C.

M114.19.a Pohlia wahlenbergii var. wahlenbergii 1‑20, (21), 22‑112. H1‑40.

M114.19.b Pohlia wahlenbergii var. glacialis 49, (57), 68, 69, 78, 88‑90, 92, 94, 96‑98, 103‑106, (107). H28.

M114.19.c Pohlia wahlenbergii var. calcarea (1), 2, (10, 17), 25, (64). H16, 34, 35, 39.

M115.1 Epipterygium tozeri 1‑6, 8‑19, 33‑35, (36), 37, 40‑50, 52, 71, 93, 98, 101, 102. H1‑6, 8, 9, 12, 20, 29, 34, (38), 39, 40. C.

M116.1 Mnium hornum 1‑112, H1‑40. C.

M116.2 Mnium spinosum 88‑90, 92, 96‑98.

M116.3 Mnium thomsonii 39, 44, 49, 57, 60, 64, 65, 69, 70, 72, 87‑90, 94, 96‑98, 104‑106, 108. H9, 16, 28, 29, 33, 35.

M116.4 Mnium lycopodioides 88, 90, 92.

M116.5.a Mnium marginatum var. marginatum (2, 3), 8, (13, 14), 22, (26), 33‑37, 39, (40), 41, 42, 44, (46), 48‑50, (52‑54), 56, 57, 59, 60, (62), 63‑70, 72, (73), 75‑77, (78), 79‑83, (84, 85), 86‑92, 94, 96‑98, (99), 101‑109, 111, 112. H(1, 6), 7, 11, 16, (20), 28, 29, 33‑35, 39, (40).

M116.5.b Mnium marginatum var. dioicum (13), 35, 41, 50, 57, (62), 63, (65, 88). H40.

M116.6 Mnium stellare 3‑17, 19, 22‑24, 27, 32‑37, (38), 39‑52, 54, (55), 56‑70, (71), 72, 73, 75‑91, (92), 94‑108, 110‑112. H2, 6, 8‑11, 16, (20, 21, 23), 28‑30, 33, 34, (35, 36), 39, 40.

M117.1 Cinclidium stygium (26), 27, 28, (48, 60), 64‑66, 69, 70, 79, 80, (87), 88, 89, (90), 92, 95, (97), 98, 102, 104, 105, 108, 112. H9, 23, 28, 29, 39.

M118.1 Rhizomnium punctatum 1‑51, (52), 53‑112. H1‑18, 20, 21, 23‑40. C.

M118.2 Rhizomnium magnifolium 87, 88, 90, 92‑94, 96‑98, 105‑107.

M118.3 Rhizomnium pseudopunctatum 3, 4, (6), 11, 12, (14, 18), 22, 25‑28, 35, 37, (38), 39‑52, 57‑60, 62‑70, 72, (73‑77), 78‑81, 83, (84), 85, (86), 87‑90, (91), 92‑98, 101‑112. H(2), 6, (12), 13, 15, 16, 19, (21), 22, 27‑30, (31, 32), 33, 35, (36, 38), 39, (40).

M119.1 Plagiomnium cuspidatum 1‑6, (7), 8, 9, (12), 13‑17, 19, 20, 22, (23), 24, (25), 26‑30, (32), 33‑45, (46), 47‑52, (53), 55‑70, (73), 75, (76), 77, 79‑85, (86), 88‑91, (92), 93, 95‑99, 101‑105, 107‑110, 112. H(1), 2‑4, (7), 12, (15), 16, (17, 20, 21), 24‑27, (28), 29, 30, (32), 34, 35, (36, 38), 39, 40.

M119.2 Plagiomnium affine 1‑66, 68‑70, 72‑75, 77, 80‑83, (84), 85, (86), 88‑106, 110. H3, 4, 8, 10, 12, (14), 15, 17, 19‑21, 25, 26, 33, 35, (36), 38, 40.

M119.3 Plagiomnium medium 88, 90, 92, 97, 98, 103, 106.

M119.4 Plagiomnium elatum (5, 6), 7‑15, (17, 18), 19, 20, 22‑29, (30), 32, 33, 35, 36, (37), 38‑45, 47‑70, (71), 72‑112. H2, 3, (5), 7‑11, 13‑19, 21‑30, 32‑36, 39, 40.

M119.5 Plagiomnium ellipticum 1, 3, 6, (14, 17, 21), 22, 23, (24), 25‑29, 32‑35, 38‑42, (43), 44‑46, 48‑50, 52‑60, 62‑70, (71), 72‑77, 79‑83, 85, 86, (87), 88‑99, 101‑112. H6‑10, (15), 16, 17, 19, 22‑25, 27‑33, 35‑37, (38), 39, (40).

M119.6 Plagiomnium undulatum 1‑112, H1‑40. C.

M119.7 Plagiomnium rostratum 2‑6, (7), 8‑51, (52), 53‑112. H1‑11, 13, 14, 16‑30, (31), 32‑37, (38), 39, 40. (C).

M120.1 Pseudobryum cinclidioides 46, 48, 49, 68‑70, 72, (73), 75, 76, 78‑83, 88, (89), 90, (91), 92, 93, (94), 95‑99, 105, (106), 107‑109, 112.

M121.1 Aulacomnium palustre 1‑22, (23), 24‑32, (33), 34‑112. H1‑40. C.

M121.2 Aulacomnium turgidum (65), 88, 96‑98, 103‑108.

M121.3 Aulacomnium androgynum (2, 3), 4‑45, (46), 47‑51, 53‑70, 72, (73), 75‑77, 80, 81, 83‑97, 99, 100, 105‑109. H11, (18), 20, 30, 31, 33, (37‑40).

M122.1 Orthodontium lineare 1‑102, 106, 109. H2, 5‑9, 11, 18‑22, 27, 29, 30, 32, 33, 36‑40. C.

M122.2 Orthodontium gracile (3), 14, (39, 40, 50, 51, 55), 58, 64, (68), 70, (75, 77), 83, (86). H33.

M123.1 Leptotheca gaudichaudii 1†, 2†. H1†.

M124.1 Calomnion complanatum H1†.

M125.1 Achrophyllum dentatum 1†.

M126.1 Calyptrochaeta apiculata 1, 14. H5.

M127.1 Daltonia splachnoides 41, 44, 97, 98, 104, 105. H1‑5, 8‑10, 14, 20, (21), 27, 29, 30, 33.

M128.1 Hookeria lucens 1‑6, 8‑17, (18), 22, 24‑29, 34‑52, (55), 57‑60, 62‑112. H1‑18, 20‑22, 24‑40. C.

M129.1 Cyclodictyon laetevirens 1, 102. H1‑3, (4, 6), 27, 29.

M130.1.a Fontinalis antipyretica var. antipyretica 1‑112, H1‑40. C.

M130.1.b Fontinalis antipyretica var. gracilis 1‑3, 5, 19, 42‑44, 46, (48), 49, (57, 59), 60, (63), 64, 65, 67‑72, (74), 75, 77‑79, (80), 83, (88, 89), 90‑93, 96, 98, 100, 104, (105), 106, 107, (108), 109, 110, 112. H7, 9, 16, 27, 39, 40.

M130.1.c Fontinalis antipyretica var. cymbifolia (5), 6, (7, 14), 24, (31), 40, 53, 57. H2, 9, 18, 23, 24.

M130.2.a Fontinalis squamosa var. squamosa 1‑5, (36, 37), 39‑50, 57, 58, (59), 60, 62‑76, 79, 80, 86‑88, (89), 90‑98, (99), 100‑102, 104‑110. H1‑8, 12, 13, 15, 16, 20, 21, 27, 30, (33), 34, 35, (36), 37, 38, 40.

M130.2.b Fontinalis squamosa var. curnowii 1, 2, (3), 4.

M131.1 Climacium dendroides 1‑6, (7), 8, 9, 11‑20, (21), 22‑31, (32‑34), 35‑75, (76), 77‑112. H1‑4, (5), 6‑30, 32‑40.

M132.1 Palustriella commutata 1‑7, 9, (10), 11‑15, (16), 17, 19, (20), 22‑29, (30), 32‑37, (38), 39‑45, (46), 47‑112. H1‑4, (5), 6‑11, 13, 14, 16‑31, (32), 33‑40. (C).

M132.2 Palustriella falcata 1‑6, (7), 9, 11, (12, 14, 18), 22, 23, (25), 26‑28, 32, 33, (34), 35‑37, (38, 39), 40‑45, (46), 47‑50, (51), 52‑55, 57‑60, (61), 62‑70, (71), 72‑75, (76), 77‑85, (86), 87‑112. H1‑3, 8, 9, 11, (12), 13, 14, 16‑20, 22‑31, 33‑36, (37, 38), 39, 40.

M132.3 Palustriella decipiens (61, 62), 88‑90, (91), 92, 96‑98, 106.

M133.1 Cratoneuron filicinum 1‑112, H1‑40. C.

M133.2 Cratoneuron curvicaule (88).

M134.1 Campylium stellatum 1‑9, 11‑15, (16), 17, (18), 19, 20, 22‑29, (30, 31), 32‑37, (38), 39‑112. H1‑40. C.

M134.2 Campylium protensum 1‑3, (4), 5, 6, 8‑20, (21), 22‑26, 28‑37, (38), 40‑42, 44‑57, 59‑70, 72‑77, (78), 80‑84, (86), 87‑91, 94‑98, 100‑106, 108‑112. H1‑5, 7‑11, 15‑17, (18), 19, 22, 23, 25‑31, 33‑35, (36, 37), 39, 40.

Читайте также:  Эхинодорус мелкоцветный (Echinodorus peruensis)

Colorado Wildbuds

Wildflower photographs from the Colorado Rockies

Site Navigation[Skip]

  • Home
  • Recent
    • 2019
    • 2018
    • 2017
  • Wildflowers by Color
    • Red/Pink
      • Allium species
      • Anemone multifida
      • Antennaria rosea
      • Aquilegia elegantula
      • Asclepias speciosa
      • Carduus nutans
      • Castilleja species
      • Chamerion species
      • Chenopodium capitatum
      • Cirsium arvense
      • Collomia linearis
      • Epilobium species
      • Erodium cicutarium
      • Geranium caespitosum
      • Geum species
      • Ipomopsis species
      • Kalmia microphylla
      • Lathyrus latifolius
      • Lewisia pygmeae
      • Linnaea borealis var. longiflora
      • Mirabilis species
      • Oxyria digyna
      • Paxistima myrsinites
      • Pedicularis species
      • Penstemon species
      • Peritoma serrulata
      • Persicaria amphibia
      • Primula species
      • Pterospora andromedea
      • Pyrola asarifolia ssp. asarifolia
      • Rhodiola species
      • Ribes montigenum
      • Rosa woodsii ssp. ultramontana
      • Rumex densiflorus
      • Salix species
      • Silene acaulis
      • Spergularia rubra
      • Stephanomeria pauciflora
      • Symphoricarpos rotundifolius
      • Trifolium species
      • Vaccinium species
    • Yellow/Orange
      • Agoseris species
      • Arnica species
      • Artemisia species
      • Balsamorhiza sagittata
        • Balsamorhiza sagittata 3788
        • Balsamorhiza sagittata 3790
        • Balsamorhiza sagittata 3794
      • Berberis repens
        • Berberis repens 4924
        • Berberis repens 8789
        • Berberis repens 8798
      • Castilleja species
      • Chrysothamnus viscidiflorus
      • Corydalis aurea
        • Corydalis aurea 1730/1743
        • Corydalis aurea 1718
        • Corydalis aurea 9057
        • Corydalis aurea 9059
        • Corydalis aurea 1782
      • Crepis atribarba
        • Crepis atribarba 1515
        • Crepis atribarba 1517
        • Crepis atribarba 1538
      • Dasiphora fruticosa
      • Descurainia species
      • Draba species
      • Drymocallis fissa
      • Ericameria parryi var. parryi
      • Eriogonum species
      • Erysimum capitatum
      • Gaillardia aristata
      • Geum species
      • Grindelia squarrosa var. squarrosa
      • Helianthella quinquenervis
      • Helianthus petiolaris
      • Heliomeris multiflora
      • Heterotheca species
      • Hieracium triste
      • Hymenoxys species
      • Linaria vulgaris
      • Lithospermum ruderale
      • Lonicera involucrata
      • Medicago lupulina
      • Melilotus officinalis
      • Mentzelia multiflora
      • Mimulus species
      • Nothocalais troximoides
      • Oenothera villosa ssp. strigosa
      • Oreochrysum parryi
      • Oreoxis alpina
      • Orthocarpus luteus
      • Opuntia species
      • Packera species
        • Packera fendleri 4455
        • Packera fendleri 4487
        • Packera fendleri 5682
        • Packera fendleri 5689
        • Packera fendleri 4489
      • Pedicularis bracteosa var. paysoniana
      • Platyschkuhria integrifolia var. desertorum
      • Potentilla species
      • Pseudocymopterus montanus
      • Purshia tridentata
      • Pyrrocoma crocea
      • Ranunculus species
      • Ratibida columnifera
      • Rudbeckia species
      • Saxifraga flagellaris
      • Sedum lanceolatum var. lanceolatum
      • Senecio species
      • Sibbaldia procumbens
      • Sisymbrium altissimum
      • Solidago species
      • Sphaeralcea coccinea
      • Taraxacum officianale
      • Tetraneuris species
      • Thelesperma subnudum
      • Thermopsis montana
      • Tragopogon dubius
      • Verbascum thapsus
      • Viola nuttallii
    • Blue/Purple
      • Aconitum columbianum ssp. columbianum
      • Aquilegia coerulea
      • Astragalus species
      • Calypso bulbosa var. americana
        • Calypso bulbosa var. americana 5404
        • Calypso bulbosa var. americana 5427
      • Campanula species
        • Campanula uniflora 5561
      • Cichorium intybus
      • Clematis hirsutissima
      • Collinsia parviflora
      • Dieteria species
      • Delphinium species
      • Erigeron species
      • Eritrichium nanum
      • Erysimum capitatum var. purshii
      • Eutrochium maculatum var. bruneri
      • Gentiana species
      • Gentianella amarella
      • Gentianopsis species
      • Hackelia floribunda
      • Herrickia glauca var. glauca
      • Ipomopsis globularis
      • Iris missouriensis
      • Linum lewisii
      • Lupinus species
      • Medicago sativa
      • Mertensia species
      • Mulgedium oblongifolium
      • Oxytropis splendens
      • Penstemon (crandallii to mensaurum)
      • Penstemon (procerus to whippleanus)
      • Phacelia species
      • Polemonium species
      • Pulsatilla patens ssp. multifida
      • Rhaponticum repens
      • Swertia perennis
      • Saussurea weberi
      • Sisyrinchium idahoense var. occidentale
      • Symphyotrichum species
      • Synthyris alpina
        • Synthyris alpina 1158
      • Veronica species
      • Vicia americana ssp. americana
      • Viola adunca
    • White/Green/Brown
      • Achillea millefolium
      • Actaea rubra
      • Agastache urticifolia
      • Amelanchier alnifolia
      • Anaphalis margaritacea
      • Androsace septentrionalis
      • Angelica grayi
      • Antennaria species
      • Anticlea elegans
      • Apocynum androsaemifolium
      • Arctostaphylos uva-ursi
      • Astragalus species
      • Bistorta species
      • Boechera species
      • Brickellia grandiflora
      • Calochortus gunnisonii
      • Caltha leptosepala
      • Cardamine cordifolia
      • Ceanothus species
      • Cerastium arvense ssp. strictum
      • Chaenactis douglasii var. alpina
      • Chaetopappa ericoides
      • Chenopodium species
      • Chionophila jamesii
      • Cirsium species
      • Clematis ligusticifolia
      • Claytonia megarhiza
      • Conioselinum scopulorum
      • Convolvulus arvensis
      • Corallorhiza species
      • Cornus canadensis
      • Cryptantha species
      • Daucus carota
      • Dryas octopetala
      • Drymocallis convallaria
      • Equisetum species
      • Eremogone species
      • Erigeron species
      • Eriogonum species
      • Eucephalus engelmannii
      • Fragaria species
      • Frasera speciosa
      • Gayophytum diffusum ssp. parviflorum
      • Galium boreale
      • Gentiana algida
      • Geranium richardsonii
      • Gilia ophthalmoides
      • Goodyera oblongifolia
      • Heracleum sphondylium ssp. montanum
      • Heuchera parvifolia
      • Hieracium albiflorum
      • Lathyrus laetivirens
      • Leucanthemum vulgare
      • Lepidium species
      • Ligusticum tenuifolium
      • Lloydia serotina
      • Maianthemum species
      • Melilotus albus
      • Micranthes species
      • Minuartia obtusiloba
      • Mitella species
      • Moneses uniflora
      • Montia chamissoi
      • Neottia cordata
      • Noccaea fendleri ssp. glauca
      • Oenothera coronopifolia
      • Orthilia secunda
      • Osmorhiza occidentalis
      • Oxypolis fendleri
      • Oxytropis sericea
      • Parnassia fimbriata
      • Pedicularis species
      • Penstemon whippleanus
      • Phlox species
      • Platanthera species
      • Prunus virginiana
      • Pseudostellaria jamesiana
      • Pyrola species
      • Ribes wolfii
      • Rubus species
      • Rumex triangulivalvis
      • Salix species
      • Sambucus racemosa var. racemosa
      • Saxifraga bronchialis ssp. austromontana
      • Shepherdia canadensis
      • Sidalcea candida
      • Smelowskia americana
      • Silene species
      • Spiranthes romanzoffiana
      • Stellaria species
      • Streptopus amplexifolius
      • Thalictrum fendleri
      • Thlaspi arvense
      • Tripleurospermum inodorum
      • Tripterocalyx micranthus
      • Trollius albiflorus
      • Valeriana species
      • Veratrum californicum
      • Viola species
    • Grasses
      • Bromus sp.
        • Bromus inermis 4004
        • Bromus inermis 1918
        • Bromus inermis 1910
        • Bromus marginatus 9066
      • Calamagrostis canadensis
        • Calamagrostis canadensis 9160
        • Calamagrostis canadensis 00058
      • Carex species
        • Carex ebenea 6054/56
        • Carex ebenea 5806
        • Carex scopulorum 5686
        • Carex scopulorum 5693
        • Carex scopulorum 4507
        • Carex scopulorum 4403
      • Deschampsia cespitosa
        • Deschampsia cespitosa 9126
      • Hordeum jubatum
        • Hordeum jubatum 9079
        • Hordeum jubatum 9086
        • Hordeum jubatum 9094
      • Luzula parviflora
        • Luzula parviflora 5828
        • Luzula parviflora 5820
        • Luzula parviflora 5824
      • Juncus drummondii
        • Juncus drummondii 6504
        • Juncus drummondii 6508
      • Phleum alpinum
    • Mosses & Lichens
      • Cladonia chlorophaea
      • Philonotis fontana
      • Polytrichum species
    • Mushrooms
      • Lycoperdon perlatum
      • Clavulina rugosa
        • Clavulina rugosa 2825
        • Clavulina rugosa 2827
  • Family
  • Scientific Name
  • Common Name
  • Search & Glossary
  • Contact Us

Philonotis fontana

Click on the images below to see larger versions.

Philonotis rigida Brid. in Europe

Published on
20-Jan-2017

Oikos Editorial Office

Philonotis rigida Brid. in EuropeAuthor(s): G. RaeymaekersSource: Lindbergia, Vol. 9, No. 1 (1983), pp. 29-33Published by: Oikos Editorial OfficeStable URL: http://www.jstor.org/stable/20149458 .Accessed: 14/06/2014 08:37

Your use of the JSTOR archive indicates your acceptance of the Terms & Conditions of Use, available at .http://www.jstor.org/page/info/about/policies/terms.jsp

.JSTOR is a not-for-profit service that helps scholars, researchers, and students discover, use, and build upon a wide range ofcontent in a trusted digital archive. We use information technology and tools to increase productivity and facilitate new formsof scholarship. For more information about JSTOR, please contact support@jstor.org.

Oikos Editorial Office is collaborating with JSTOR to digitize, preserve and extend access to Lindbergia.

This content downloaded from 62.122.73.34 on Sat, 14 Jun 2014 08:37:56 AMAll use subject to JSTOR Terms and Conditions

LINDBERGIA 9: 29-33. Copenhagen 1983

Philonotis rigida Brid. in Europe

Raeymaekers, G. 1983. Philonotis rigida Brid. in Europe. –

Lindbergia 9: 29-33.

The European material of Philonotis rigida Brid. has been revised. P. rigida var.

longipedunculata C. Muell. ex Broth, and P. schliephackei Roll are synonymous with

P. rigida Brid. var. rigida; P. rigida var. gracilis Schimp. is synonymous with P. marchica (Hedw.) Brid.

Special attention has been paid to the propagules of P. rigida. Plants with

sporophytes bear propagules less frequently than plants without sporophytes; the

propagules are most regularly found at the end of the winter.

The ecology and distribution of P. rigida are briefly discussed.

G. Raeymaekers, Nationale Plantentuin van Belgi?, Domein Van Bouchout, B-1860

Meise, Belgium. Present address: Dept. of Biol. Sei., Michigan Technological Univ.,

Houghton, MI 49931, USA

nepecMOTpeH eBpone?CKH? MaTepHaji Philonotis rigida Brid.

P. rigida var. longipedunculata C. Muell. ex Broth h P.

schliephackei Roll hbjihiotch CHHOHHMaMH P. rigida Brid.

var. rigida; P. rigida var. gracilis Schimp. HBJineTCH ch

hohhmom P. marchica (Hedw.) Brid. ocoeoe BHHMaHHe yflejineTCH

no6eraM P. rigida. PacTeHHH co cnopo$HTaMH hocht no?ern

peace, qeM pacTeHHH 6e3 chopoOhtob ; no?ern ^ame Bcero

BCTpe^aiDTCH B KOHUe 3HMbl. KpaTKO O?Cy?flaiOTCH SKOJlOrHH H

pacnpocTpaHeHHe P. rigida.

In connection with the revision of the Belgian Bar

tramiaceae (Raeymaekers 1981), I prepared for the

“Workgroup for mapping the bryophytes in Europe” a distribution map o? Philonotis rigida Brid. In total 371

specimens of P. rigida have been checked from the fol

lowing herbaria: B, BCF, BM, BP, BR, DUIS, E, G, GJO, L, Lille Villeneuve d’Ascq, PC, S, W, WBM, Z, priv. herb, of E. Jacques, R. B. Pierrot, F. Koppe.

Philonotis rigida is the only monoecious species of the

genus in Europe. Together with the other monoecious

species of its section, Philonotula (Brotherus 1924), it forms a well defined group. The differences between these species are based on the leaf shape and dimen

sions, the leaf border, the areolation, the nerve, the

aspect of the leaves, and the length of the seta. How

ever, none of the first descriptions of the monoecious

species of section Philonotula mentions the presence and form of the propagules, nor gives a clear picture of

the location of the mamillae. Limpricht (1895) first mentions the presence of propagules for P. rigida, as

“vereinzelten intercalaren Sprossen, br?chig.” Correns

(1899) mentions “br?chigen Stengeln.” Petit (1976) has well described and illustrated the

propagules of Philonotis rigida, and is the first to draw attention to the possible taxonomical value of the pro

pagules in Philonotis.

Philonotis rigida Brid., Bryologia Universa, II: 17

(1827). Syn. Philonotis rigida var. longipedunculata C. Muell. ex

Broth. Acta Soc. Fenn., 19 (12): 15 (1892). PhUonotis schliephackei Roll, Hedwigia, 41: 216 (1902).

Holotype: Calabria, leg. Reynier, (B).

Accepted 1 June 1982

LINDBERGIA 9:1 (1983) 29

This content downloaded from 62.122.73.34 on Sat, 14 Jun 2014 08:37:56 AMAll use subject to JSTOR Terms and Conditions

Description (Fig. 1): Autoecious. Plants densely tufted, 0.9-1.8 (2.4) cm long. Stem irregularly branched, with

subgametoecial whorls; densely covered with tomentum

below whorls. Cross-section of stem pentagonal; central

strand very small or absent; inner cortical cells large,

thin-walled; outer cortical cells incrassate, orange-red;

epidermis sphagnoid. Leaves pale green, erect to erec

to-patent, crowded, rigid, narrowly lanceolate, (0.80)

1.0-1.40 (2.0) x 0.20-0.56 (0.62) mm, L/W propor

tion 4-5. Margin plane or slightly recurved over 1-3

cells, toothed, teeth single from near the base up to the

apex. Nerve excurrent over (97) 165-280 (440) urn, toothed adaxially and abaxially above middle, 28-40

Urn wide at the base of the leaf. Lamina cells in lon

gitudinal rows, rectangular with rounded ends, towards

the leaf base 8-10 (12) x 28-56 (72) urn, towards the

apex 6-8 (10) x (14) 24-60 (74) urn Cell wall 2-3 um thick. Cells distinctly mamillose distally and adaxially, slightly mamillose proximally and abaxially (Fig. 2).

The mamillae thus appear to lie on the end-walls.

Rhizoids brown-red, smooth. Propagules small, 0.7-0.9

mm, one per leaf axil, gemmiform, base (stalk) long and

tufted with leaves at the apex. Perigonial and perichae

tial leaves similar: lanceolate, acute, with enlarged base,

nerve excurrent. Seta orange-brown, 1.1?1.8 (4.1) mm

long; capsule globose, inclined, deeply furrowed when

dry; wet 1.71-2.64 mm wide and (1.86) 2.14-2.57 mm

long, dry 1.14-1.29 (1.71) mm wide and 1.57-2.14 mm

long; lid conical, small. Peristome: exostome of 16

teeth, orange, papillose, without interlamellar thicken

ings (“tori”), endostome hyaline, papillose, without

cilia. Spores reniform, 16-21 x 24-30 ^im, brown,

Five varieties of Philonotis rigida have been de scribed. I have been able to study and localize the types of Philonotis rigida var. longipedunculata C. Muell. ex

Broth., var. schliephackei (Roll) Dism., and var. gracilis

Schimp. I have not seen the type of Philonotis rigida var.jovetii V. Allorge and of var. minus V. et P. Allorge which is a nomen nudum.

– Philonotis rigida var. longipedunculata C. Muell. ex Broth., Acta Soc. Se. Fenn., 19 (12): 15 (1892). Bartramia rigida var. longipedunculata C. Muell., Acta Horti

Petropolitani, 10 (1): 257 (1887) nom. nud.

Holotype: Caucasia, Batum, leg. Kaernbach

(K?rnbach), 14 Apr 1886, comm. H. Graef, ex herb. H.

According to the first description, this variety is characterized by the very long setae, 1.5-4.1 mm in the

type specimen. Since I found this character too variable,

I consider P. rigida var. longipedunculata as synonym ous with P. rigida var. rigida. In none of the specimens collected by Kaernbach could I find propagules.

– Philonotis rigida var. schliephackei (Roll) Dism., M?m. Soc.

Nat. Se. Natur. Math. Cherbourg, 36: 386 (1907).

Basionym: Philonotis schliephackei Roll, Hedwigia, 41: 216

Holotype: Ungarn, Kalkfelsen der Sch?tzh?le bei Her

kulesbad, Leg. D. Roll, 4 Jul 1900 (WBM).

According to Roll (1902) P. schliephackei is closely al lied to a slender form of P. calc?rea (B.S.G.) Schimp. It

was therefore placed into synonymy with P. calc?rea by

Fig. 1. Philonotis rigida Brid. a. Stem. b. Capsule (dry), c. Capsule (wet), d-e. Propagules. f-g-h. Leaves, i. Lamina cells, j. Stem

cross-section, k. Perichaetial leaf.

30 LINDBERGIA 9:1 (1983)

This content downloaded from 62.122.73.34 on Sat, 14 Jun 2014 08:37:56 AMAll use subject to JSTOR Terms and Conditions

Limpricht (1904), Roth (1905), Podpera (1954), and van der Wijk et al. (1967). However, Dismier (1907) considers P. schliephackei as a variety of P. r?gida, and

Gy?rffy (1942) considered it a good species and dis cusses its ecology at length. He indicates that the plant grows shaded, above a calcareous hot spring, rich in

H2S, CH4, and N2. The longer less densely-leaved stems without tomentum, the less rigid leaves and the fairly uniform larger cells characterize this taxon.

In view of these data, I consider it as an ecological form of P. r?gida. The form is only known from the type locality and from Italy [Ischia, Stufe de Cacciutti, ad

vaporar?a, leg. Giordano (BP)]. It is not known from

France, Great Britain, and Switzerland as wrongly mentioned by Boros (1969).

– Philonotis r?gida var. gracilis Schimp., Syn. ed. 2: 517

Lectotype: In sylvis ad stillicidium aquarum, leg. Bicchi,

mayo 1854, sub nom. P. fontanae (BM).

All the specimens cited by Schimper (1876) are dioe cious and have non-rigid leaves. In one tuft of the type

Ссылка на основную публикацию